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产品信息

产品名称

产品编号

规格

无内毒素质粒DNA中提试剂盒

KSG3648-10T

10T


产品简介

本试剂盒是采用对质粒具有专一吸附作用的玻纤膜,再结合特殊的缓冲Buffer组合,可以有效地从培养的细菌中提取各种无内毒素质粒(内毒素含量≤0.1 EU/μg),根据质粒拷贝数的不同,质粒得量在100-400 μg,提取的高纯度质粒可应用于后续的酶切反应、连接反应、PCR扩增、测序、转化、转染等多种生物学实验。


储存与运输

RNase A冰袋(wet ice)运输,-20℃保存;其余试剂室温运输,室温储存;有效期12个月。


组成

Component Number

Component

G3648-10T

KSG3648-1

Buffer BL

25 mL

KSG3648-2

Buffer P1

30 mL(使用前加入RNase A)

KSG3648-3

Buffer P2

30 mL

KSG3648-4

Buffer P3

30 mL

KSG3648-5

RNase A

600 μL

KSG3648-6

Buffer ER

10 mL

KSG3648-7

Buffer ED

40 mL

KSG3648-8

Buffer PW

16 mL(使用前加入64 mL无水乙醇)

KSG3648-9

Buffer TE

15 mL

KSG3648-10

Column Filters

10个

KSG3648-11

HiBind DNA Midi Columns

10个

KSG3648-12

15 mL Centrifuge Tubes

10个

说明书

1份


使用前准备

1. 自备无水乙醇。

2. 准备42℃水浴或加热模块。

3. 使用前先将RNase A全部加入Buffer P1中,并于4℃可保存6个月。

4. Buffer PW使用前加入64 mL的无水乙醇。

5. Buffer P2如出现沉淀,请于37℃水浴中加热几分钟即可恢复澄清,使用后应立即盖紧盖子,避免试剂长时间与空气接触。

6. Buffer P3使用前请于4℃预冷。


实验步骤

1. 柱平衡步骤:向HiBind DNA Midi Column中加入2 mL Buffer BL,4500×g室温离心2 min,弃掉废液,将HiBind DNA Midi Column重新放回Collection Tube中(处理过的柱子最好立即使用);

2. 取20-50 mL过夜培养菌液,8000×g室温离心1 min收集菌体于50 mL离心管中(尽量将上清全部去除),低拷贝或大于10 kb的质粒建议适当增大菌体量,并等比例增加Buffer P1、Buffer P2、Buffer P3的量;

3. 加入2.5 mL Buffer P1(请先确认是否加入RNase A),使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮菌体(务必使菌体彻底分散,否则会影响裂解,导致提取质粒的质量和纯度偏低);

4. 加入2.5 mL Buffer P2,立即温和地上下颠倒8-10次使菌体充分裂解(此步不可剧烈震荡,避免造成基因组DNA剪切断裂,并且应保证在5 min以内完成),此时溶液应变得清亮粘稠,如果未变得清亮可能是菌体过多,裂解不彻底,应考虑降低菌体量;

5. 加入2.5 mL Buffer P3(提前4℃预冷)立即温和地上下颠倒10-12次充分混匀,溶液出现紧实凝集块,8000×g室温离心15 min,将上清慢慢地全部倒入Column Filter中,推动推柄过滤,滤液收集于15 mL Nuclease-free离心管(自备)中;

6. 加入750 μL Buffer ER,颠倒混匀后冰上放置10 min(期间颠倒混匀3-5次),溶液呈透明蓝色;

7. 42℃孵育5 min溶液恢复浑浊,4500×g室温离心5 min(离心机温度必须恢复至室温,否则会影响分层),此时溶液分为上下两层(如果分层不明显,室温放置1-3 min),上层为澄清水相,下层为蓝色,小心收集上层水相至新的15 mL Nuclease-free离心管(自备)中;

8. 加入0.5倍上述溶液体积的无水乙醇,上下颠倒混匀后将溶液转移到HiBind DNA Midi Column中(每次加入液体量不超过4 mL);

9. 4500×g室温离心3 min,弃掉Collection Tube中的废液,将HiBind DNA Midi Column重新放回Collection Tube中(第8步的溶液需进行多次过柱);

10. 向吸附柱中加入3.5 mL Buffer ED 4500×g室温离心3 min,弃掉Collection Tube中的废液,将HiBind DNA Midi Column重新放回Collection Tube中;

11. 向HiBind DNA Midi Column中加入3.5 mL Buffer PW(确认是否加入无水乙醇),4500×g室温离心3 min,弃掉Collection Tube中的废液,将HiBind DNA Midi Column重新放回Collection Tube中;

12. 重复操作步骤11;

13. 4500×g室温离心10 min,然后将HiBind DNA Midi Column置于15 mL Centrifuge Tube中,开盖室温放置10 min,使乙醇彻底挥发;

14. 向HiBind DNA Midi Column的膜中间部位悬空滴加500-1000 μL Buffer TE或Endo-free Water,室温放置5 min,4500×g离心5 min。如果需要增加质粒的回收效率,可将得到的溶液重新加入到HiBind DNA Midi Column中,室温放置5 min后,4500×g离心5 min;

15. 得到的质粒DNA可于-20℃长期保存。


注意事项

1. 操作之前,请务必认真阅读本产品说明书。

2. 避免直接接触Buffer P2、P3,ED使用后应立即盖紧盖子。

3. 提取的质粒为低拷贝质粒或者质粒大于10 kb时,应增加菌体收集量,同时等比例增加Buffer P1、Buffer P2、Buffer P3的量。

4. 可将洗脱液于60-65℃预热,并延长洗脱孵育时间,可提高洗脱效率。

5. 洗脱质粒前应使乙醇完全挥发,避免残留的乙醇影响下游实验。

6. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

本产品仅供科研用途,不用于临床诊断!



附操作流程简图


 




(产品包装升级中,以实物为准。


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